细胞膜荧光探针是一种亲脂性的荧光染料，可以用来染细胞膜和其它脂溶性生物结构进入细胞膜后，本产品在整个细胞膜上扩散，最佳浓度时可以使整个细胞膜染色。在进入细胞膜之前荧光非常弱，当与细胞膜结合后其荧光强度大大增强，细胞膜荧光探针被激发后可以发出绿色的荧光，具有很高的淬灭常数和激发态寿命。可以用标准的 FITC滤光片检测。
细胞膜荧光探针通常不会明显影响细胞的生存力，因此被广泛用于正向或逆向的，活的或固定的神经等细胞或组织的示踪剂或长期示踪剂。除了简单的细胞膜荧光标记外，还可以用于检测细胞的融合和粘附，检测发育或移植过程中细胞迁移，通过FRAP(Fluorescence Recovery After Photobleaching)检测脂在细胞膜上的扩散，检测细胞毒性和标记脂蛋白等。
细胞膜荧光探针的使用方法：
1、染色液制备：
a、配置DMSO或EtOH 储存液：储存液用 DMSO或EtOH配置浓度1～5 mM。
b、工作液制备：用合适的缓冲液（如：无血清培养基，HBSS或PBS）稀释储存液，配制浓度为1～5 μM的工作液。
2、悬浮细胞染色：
a、悬浮细胞密度为1×106/mL加入到工作液中。
b、在37 ℃培养细胞2～20分钟，不同的细胞最佳培养时间不同。
c、染色细胞试管在1000～1500转离心5分钟。
d、倾倒上清液，再次缓慢加入预温37℃的培养液。
e、重复c、d步骤两次以上。
3、粘壁细胞的染色：
a、使粘壁的细胞在无菌实验室培养。
b、从培养基中移走盖玻片，吸走过量培养液，将盖玻片放在潮湿的环境中。
c、在盖玻片的一角加入100μL的染料工作液，轻轻晃动使染料均匀覆盖所有细胞。
d、在37 ℃培养细胞 2～20分钟，不同的细胞最佳培养时间不同。
e、吸干染料工作液，用培养液洗盖玻片2～3次，每次用预温的培养基覆盖所有细胞，培养5～10分钟，然后吸干培养基。
4、流式细胞仪检测：
染色的细胞可以分别用经典的FL1，FL2，FL3和FL4流式细胞仪检测。
